Estudio comparativoclínico-radiográfico de la eficiencia del xerogel y liposoma a base de quitosano para el tratamiento de la osteítis alveolar en ratas Wistar.

José Araujo, Eglee Negrón, Gladys Josefina Velazco Viloria, Dubraska Suárez Vega, Anajulia González, Rosalba Florido P.

Resumen


La osteítis alveolar es una patología infecto-inflamatoria conocida como la complicación post-quirúrgica más común, que produce un intenso dolor. Las terapias convencionales en ocasiones producen efectos adversos; por ello han surgido tratamientos alternativos, como los biomateriales. El quitosano, es un biomaterial de origen natural, biocompatible, analgésico, antimicrobiano, coagulante, cicatrizante y regenerador óseo. Sin embargo, su efecto en la osteítis alveolar no ha sido estudiado. Por estas razones, se perfila como una alternativa terapéutica para esta patología. Se comparó la eficiencia del xerogel y liposoma a base de quitosano, para la remisión de la osteítis alveolar en ratas Wistar. Este estudio fue realizado en 15 ratas Wistar machos, adultas con peso entre 300gr-350gr, provistas por el Bioterio de la Universidad de Los Andes (BIOULA), se les extrajo el incisivo superior derecho y se indujo la osteítis alveolar. Los animales fueron divididos al azar en tres grupos: 5 ratas para el grupo control, 5 ratas para el grupo A tratadas con xerogel y 5 ratas para el grupo B con liposoma. Estos grupos fueron evaluados clínicamente a los 3, 7, 10, 14 días y radiográficamente a los 7 y 14 días. Los signos clínicos remitieron más rápidamente con el liposoma, seguido por el xerogel en último lugar el grupo control. Radiográficamente, el liposoma produjo regeneración ósea más acelerada en comparación con el xerogel. Se concluyó que tanto el liposoma como el xerogel a base de quitosano representan una excelente terapéutica para la osteítis alveolar en ratas Wistar, siendo más eficiente el liposoma.


Palabras clave


Osteítis Alveolar; Quitosano; Xerogel; Liposoma; Biomateriales; Reparación

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Referencias


Peñaloza U. Complicaciones post-exodoncia más frecuentes en pacientes de la clínica odontológica de la Universidad Nacional Jorge Basadre Grohmann. Revista Médica Basadrina. 2009;3(1):12-15

Martín O, Lima M, Zuleta M. Alveolitis. Revisión de la Literatura y Actualización. Rev Cub Estomatol 2001;38(3):176-80

Martín O, Paz E, Romero C, Mejías M. Láser Terapéutico en el tratamiento de las Alveolitis. Instituto Superior de Ciencias Médicas. 2009. [Citado 15 de julio de 2010]. Disponible en http://www.monografias.com/trabajos28/laser-Osteítis Alveolar/laser-Osteítis Alveolar.shtml

Díaz A, Montero A, González M. Tratamiento de la Alveolitis con extracto Acuoso de Aloe Vera [internet]. Argentina: Hospital Oncológico María Curie [Citado 15 de Julio de 2010]. Disponible en: http://www.revistaciencias.com/publicaciones/EEZFllZpkyDGMXPxfy.php

Torres D, Serrera M, Romero M, Infante P, García M, Gutiérrez J. Alveolitis Seca. Actualización de Conceptos. Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2005;10(1):77-85

Contreras M, Lleras M. Uso de la clorhexidina al 0,12% como método preventivo de la osteítis alveolar en pacientes con extracción indicada del tercer molar inferior incluido [tesis]. Mérida, Venezuela: Universidad de Los Andes, Facultad de Odontología; 2005

Marimón M, Corbo M, Cabeza H, Ferro A. Cirugía Ambulatoria con Anestesia Local en el Tratamiento de la Comunicación Buco Sinusal mediata y tardía. Rev Ciencias Médicas. 2008;12(2):70-79

Tan N, Hidalgo C, Tan S, Rodríguez G, Fernández N. Tratamiento homeopático vs Alvogyl. Rev AMC. 2008;12(3):0-0. Disponible en: http://scielo.sld.cu/pdf/amc/v12n3/amc08308.pdf

Nápoles I, Batista X, Rivero O, Díaz S, Fernández N. Incidencia de la Alveolitis. Rev AMC. 2009;13(2). Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1025-02552009000200004&lng=en

Osorio M. Confección, Validación y aplicación de uma prueba de conocimientos sobre Alveolitis [Tesis]. Ciudad de la Habana: Facultad Estomatología Raúl González Sánchez; 2007

Arteagoitia M, DiezM, Barbier L, landa S, Santamaria G, Santamaria J. Antibioterapia sistémica preventiva de la Alveolitis seca en la exodoncia del tercer molar inferior: revisión sistémica. RCOE. 2002;7(6):603-611

Martínez R, Mingo P, Giner J, Marqués F. Sultamicilina: estudio de la complicación infecciosa en la exodoncia de terceros molares. RCOE. 2002;7(6):591-597

Borges R, Sampayo Y, Menéndez J, Sánchez J, Castro D, Menéndez E. Evaluación de pacientes afectados de Alveolitis: Uso del metronidazol tópico en dosis única. Gaceta Médica Espirituana. 2009 [citado el 15 Julio de 2010];11(1). Disponible en: http://www.bvs.sld.cu/revistas/gme/pub/vol.11.(1)_03/p3.html

Torres M, Díaz M, Acosta A. La Clorhexidina, bases estructurales y aplicaciones en la estomatología. Gaceta Médica Espirituana. 2009 [citado el 15 de Julio de 2010];11(1). Disponible en: http://www.bvs.sld.cu/revistas/gme/pub/vol.11.(1)_08/p8.html

Martin O, Ferrales Y, Fernández C. Eficacia de la magnetoterapia en el tratamiento de la Alveolitis. Rev AMC. 2010;1(14). Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1025-02552010000100010&lng=es

Cruz O, Menéndez S, Martínez M, Clavera T. Aplicación de la ozonoterapia en el tratamiento de la Alveolitis. Rev Cubana de Estomatol. 1997;34(1):21-24

Peña A, Martín O. Evaluación del postoperatorio en exodoncias con electroacupuntura vs tratamiento convencional. AMC. 2003 [Citado el 18 Julio 2010];7(5). Disponible en:http://www.amc.sld.cu/amc/2003/v7supl1/700.htm

Hernández D, Trujillo B, Brito L, Cuadrado L. Utilización de la terapia floral en la Alveolitis mediante el empleo de los patrones transpersonales. [internet] 2002 [citado el 15 de agosto de 2010]. España. Disponible en: http://www.sedibac.org/temas/tema.alveolitis.pdf

Gómez Y, Vilvey L, Sánchez L, Díaz L. Uso de propóleos al 5% en el tratamiento de la Alveolitis. Gaceta Medica Espirituana. 2008;10(1). Disponible en http://www.bvs.sld.cu/revistas/gme/pub/vol.10.(1)_06/p6.html

Jorquera R, Jorquera O, Rivera S. Quitosano: Un material con Propiedades regenerativas y su Aplicación Clínica [internet]. REDOE. 2008 [Citado el 10 de julio de 2010]. Disponible en: http://www.redoe.com/ver.php?id=100

Lárez C. Quitina y Quitosano: Materiales del pasado para el presente y el futuro. Rev Avances en Química. 2006;1(2):15-21

Marguerite R. Chitin and chitosan: Properties and applications. Progress in Polymer Science. 2006;31(7):603-632

Veiga M, Ruiz R. El Quitosano: Usos farmacéuticos y biológicos. Rev OFIL. 2004;14(2):33-42

Akman A, Tığlı R, Gümüşderelioğlu M, Nohutcu R. bFGF-loaded HA-chitosan: A promising scaffold for periodontal tissue engineering. J Biomed Mater Res Part A. 2010;92A(3):953-962

Yufeng Z, Yining W, Bin S, Xiangrong C. A platelet-derived growth factor releasing chitosan/coral composite scaffold for periodontal tissue engineering [Resumen]. 2006 [Citado el 20 de Julio de2010]

Park J, Choi S, Moon I, Cho K, Chai J, Kim C. Eight-week histological analysis on the effect of chitosan on surgically created one-wall intrabony defects in beagle dogs [resumen]. J Clin Periodontol. 2003;30(5):443-453

Arias F. El proyecto de Investigación. Introducción a la metodología científica. 5ta ed. Caracas, Venezuela: Episteme; 2006

González J. Modelos animales de dolor y aspectos éticos de la experimentación animal. Rev Soc Esp Dolor. 2000;7(5):313-318

Ortega A, Roca A, Mico J. Modelos animales de dolor: una visión crítica. Rev Soc Esp Dolor. 2002;9(7):447-453

Rodríguez E. Ética de la investigación en modelos animales de enfermedades humanas. Acta bioeth. 2007. 13(1): 25-40

Molina F. Efecto del Plasma Rico en factores de crecimiento (PRFC) em la regeneración de tejidos blandos y tejido ósseo. Estudio experimental em conejos albinos de Nueva Zelanda [Tesis]. Murcia España. 2008

Suárez D. Efectividad del Quitosano en la regeneración Ósea [Tesis]. Mérida, Venezuela: Universidad de Los Andes, Facultad de Odontología; 2011. [Resultados no publicados]

Dias J, Oliveira S, Bosco A, Schweitzer C, Jardim E. Influence of Local Tetracycline on the Microbiota of Alveolar Osteitis in Rats. Braz Dent J. 2008;19(2):119-123

Wang X, Ma J, Wang Y, He B. Structural characterization of phosphorylated chitosan and their applications as effective additives of calcium phosphate cements. Biomaterials. 2001;22(16):2247-2255

Fwu-Long M, Shin-Shing S, Yu-Bey W, Sung-Tao L, Jen-Yeu S, Rong-Nan H. Fabrication and characterization of a sponge-like asymmetric chitosan membrane as a wound dressing [resumen]. Biomaterials. 2001;22(2):165-173

Balicka-Ramisz A, Wojtasz-Pajak A, Pilarczyk B, Ramisz A, Laurans L. Antibacterial and antifungal activity of chitosan. ISAH. 2005;2(1):406

Bae K, Jun E, Lee S, Paik D, Kim J. Effect of water-soluble reduced chitosan on Streptococcus mutans, plaque regrowth and biofilm vitality [resumen]. Clin Oral Invest. 2006;10(2):102–107

Zhao H, Sun G, Miao D. Antibacterial Activity of dental alginate impression materials impregnated with chitosan [resumen]. Progress in Biomedicine. 2008;8(8):1462-1503

Espinoza E. Propiedades Físicas y Biológicas de dos tipos de esponjas de Quitosano para su aplicación como biomaterial [tesis]. Lima, Perú: Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Facultad de Odontología; 2007

Arancibia R, Tobar N, Fuentes N, Silva D, Tapia C, Smith P, Martínez J. Efecto antiinflamatorio de nanopartículas de quitosano en fibroblastos gingivales humanos. Conferencia IADR; 2011

Hiroshi S, Ken-Ichiro S, Takashi M, Yoshinori T. Effect of chitosan rinsing on reduction of dental plaque formation. Tokyo dent Coll. 2003;44(1):9-16

Lárez Cl. Algunos Usos del Quitosano en Sistemas Acuosos. Rev Iberoamericana de Polímeros. 2003;4(2):91-109

Senel S, McClure S. Potential applications of chitosan in veterinary medicine. Advance drug Deliv Rev. 2004;10(56):1467-1480

Lemus J, Martínez L, Navarro M, Posadas A. Obtención y uso de Quitosano para tratamientos dérmicos a partir de exoesqueleto de camarón [boletín electrónico]. Guatemala: Universidad Rafael Landivar. [Citado 11 de julio de 2010]. Disponible en http://www.tec.url.edu.gt/boletin/URL_07_QUI01.pdf

Suphasiriroj W, Yotnuengnit P, Surarit R, Pichyangkura R. The fundamental parameters of chitosan in polymer scaffolds affecting osteoblasts (MC3T3-E1) [resumen]. J Mater Sci: Mater Med. 2008;1(20):209-320





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